T/ZJZYC 003-2021
Reglamento técnico para la reproducción de plántulas de Dendrobium officinale (Versión en inglés)

Estándar No.

T/ZJZYC 003-2021

Idiomas

Chino, Disponible en inglés

Fecha de publicación

2021

Organización

Group Standards of the People's Republic of China

Ultima versión

T/ZJZYC 003-2021

Alcance

4. Las plantas originales para la producción de plántulas deben ajustarse a las características vegetales de la orquídea Dendrobium officinale (también conocida como Dendrobium officinale Kimura et Migo) registradas en el "Atlas Superior de Plantas de China". Seleccione fuentes de alta calidad, alto rendimiento, resistentes a enfermedades y al estrés que sean adecuadas para el entorno de cultivo local. El terreno de plantación debe tener buenas medidas de aislamiento físico o no debe haber otros tipos de dendrobium en un radio de 1000 m. Las plantas que conservan semillas deben seleccionarse con variedades puras y de crecimiento fuerte. 4.2 Cultivo de plántulas 4.2.1 Producción de semillas Durante el período de máxima floración, tome las anteras y estigmas más viables de la misma cepa para la polinización. Los labios de la madre se eliminarán inmediatamente después de la polinización y la etiqueta aparecerá a tiempo. Después de la polinización, coseche frutos maduros y llenos cuando las cápsulas comiencen a ponerse amarillas. 4.2.2 Siembra de cápsulas: Lavar las cápsulas cosechadas con agua esterilizada y colocarlas en una mesa de trabajo limpia, después de remojarlas en etanol al 75% durante 1 minuto, enjuagar la superficie con agua esterilizada de 3 a 5 veces. Luego sumérjalo en NaClO con una concentración de 1,0% a 1,5% durante 20 minutos, agítelo constantemente, enjuáguelo con agua esterilizada de 5 a 6 veces para que sea inodoro, absorba el agua con papel de filtro esterilizado y corte la cápsula con papel de filtro esterilizado. tijeras.Haga una muesca en la parte superior, agite suavemente y esparza las semillas en la cápsula uniformemente sobre el medio de germinación de semillas MS+jugo de coco 100 ml/L~200 ml/L+sacarosa 30 g/L+agar 8 g/L, pH 5,6. ~5.8. 4.2.3 Subcultivo: Cuando las plántulas crezcan hasta 1 mm ~ 3 mm, transferir al medio de subcultivo MS+6-BA0,5 mg/L ~ 1,5 mg/L + sacarosa 30 g/ L + agar 8g/L, pH 5,6~5,8, para subcultivo. 4.2.4 Cultivo de enraizamiento: Cuando las plántulas crezcan hasta 1,0 cm ~ 1,5 cm de altura, transfiéralas a un medio de enraizamiento 1/2 MS + plátano 100 g/L + sacarosa 30 g/L + agar 8 ; g/L, pH 5,6~5,8, para cultivo de enraizamiento. 4.3 Cultivo clonal 4.3.1 Desinfección de explantes: corte segmentos de tallo con yemas de 1,0 cm a 2,0 cm de largo, lávelos con agua esterilizada, colóquelos en una mesa de trabajo limpia y sumérjalos en etanol al 75 % durante 1 minuto, enjuague el superficie con agua esterilizada de 3 a 5 veces, luego sumérjala en NaClO con una concentración de 1,0 % a 1,5 %, agregue 1 a 2 gotas de Tween-20 y agite continuamente, enjuague con agua esterilizada después de 8 min a 10 min Enjuague con agua bacteriana de 5 a 8 veces y absorber el agua con papel de filtro esterilizado. 4.3.2 Inducción y proliferación de yemas adventicias: Cortar segmentos de tallo con yemas de 0,5 cm a 1,0 cm de largo e inocularlos en medio de inducción de yemas adventicias MS+jugo de coco 150 ml/L+sacarosa 30 g/L+agar 8 g/L , pH 5,6. Después de que crezcan las yemas adventicias, inocular en medio de proliferación de yemas adventicias MS+6-BA1,0 mg/L~1,5 mg/L+NAA 1,0 mg/L+sacarosa 30 g/L+agar 8 g /L, pH 5,6~5,8. La sucesión de yemas adventicias se controla entre 6 y 8 generaciones. 4.3.3 Inducción, proliferación y diferenciación de protocormos: Despegar la punta del brote con tejido meristemático de aproximadamente 5 mm e inocularlo en el medio de inducción de protocormos MS+6-BA1,5 mg/L~2,5 mg/L+NAA 0,2 mg/L+patata100g/L+sacarosa30g/L+agar8g/L, pH 5,6~5,8. Inocular el protocormo en el medio de proliferación de protocormos MS+6-BA 0,5 mg/L+NAA 1,5 mg/L+patata 50 g/L+sacarosa 30 g/ L, pH 5,6 ~ 5,8. Inocular protocormos en medio de diferenciación de protocormos MS+6-BA1,5 mg/L+NAA 0,5 mg/L + sacarosa 30 g/L + agar 8 g/L, pH 5.6~5.8. La sucesión de protocormos se controla entre 6 y 8 generaciones. 4.3.4 Cultivo de enraizamiento: Cuando las plántulas crezcan hasta 1,0 cm ~ 1,5 cm de altura, transfiéralas a un medio de enraizamiento 1/2 MS + plátano 100 g/L + sacarosa 30 g/L + agar. 8 g/L, pH 5,6 ~ 5,8, para cultivo de enraizamiento. 4.4 Condiciones de cultivo: intensidad de luz 30μmol·m-2·s-1~60μmol·m-2·s-1, temperatura diurna 25 ℃ ± 2 ℃, temperatura nocturna 22 ℃ ± 2 ℃ (cultivo oscuro). 12h~14h de luz todos los días. 5 Requisitos de calidad Consulte el Apéndice A para conocer los indicadores de grado de calidad, los métodos de inspección y las reglas de inspección de las plántulas en botellas de cultivo de tejidos. 6 Embalaje, marcado, transporte y almacenamiento 6.1 Marcas de embalaje Las plántulas de botellas de cultivo de tejidos deben embalarse en cajas de plástico o cajas de cartón. En la caja de empaque se incluye el certificado de fábrica de plántulas (vivero), en el exterior se debe indicar las plántulas o plántulas inducidas por protocormos, cantidad, fecha de emergencia, número de lote, número de estándar, dirección y número de contacto de la unidad de producción, y otra información. Se implementará de acuerdo con GB/T 191. 6.2 La temperatura debe controlarse durante el transporte. La temperatura adecuada es de 22 ℃ ~ 25 ℃. 6.3 Almacenamiento Las plántulas en botella de cultivo de tejidos se pueden almacenar durante 7 días a 10 días en condiciones normales de temperatura y luz débil. 7 Gestión de campo La gestión de campo se llevará a cabo de acuerdo con DB33/T635-2015.

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