Incluyendo descripciones de contenido técnico importante, como la recolección de muestras (incluida la información de trazabilidad), los requisitos básicos de calidad, los estándares de clasificación de calidad, los métodos de inspección, los materiales de embalaje, las condiciones y los períodos de almacenamiento. 1 Investigación sobre métodos de inspección de semillas de Sophora flavescens 1.1 Materiales de prueba Se recolectaron 18 copias de semillas de Sophora flavescens desde abril de 2013 hasta enero de 2015, incluidas 9 copias de Hebei, 3 de Anhui, 2 del noreste de China, 2 de Shanxi y 2 del interior. Mongolia (Tabla 1). Tabla 1 Fuente de muestras de semillas de Sophora flavescens Número de muestra fuente hora de recolección Número de muestra fuente hora de recolección K-1 Hebei Chengde 2014.4 K-10 Anhui 2014.4 K-2 Hebei Anguo 2014.4 K-11 Mongolia Interior 2013.4 K-3 Hebei Anguo 2014.4 K- 12 Shanxi 2013,4 K-4 Anhui Bozhou 2014,4 K-13 Noreste 2013,4 K-5 Noreste 2014,4 K-14 Hebei Chengde 2013,4 K-6 Hebei Chengde 2014,4 K-15 Shanxi Changzhi 2014,9 K-7 Hebei Anguo 2014,4 K-16 Mongolia Interior 2015,1 k- 8 Hebei Anguo 2014.4 K-17 Hebei Anguo 2015.1 K-9 Anhui Bozhou 2014.4 K-18 Hebei 2015.1 1.2 Método de prueba 1.2.1 Corte la muestra utilizando el método de reducción a la mitad con las manos desnudas para tomar la muestra directamente para su inspección. Los pasos son los siguientes: Vierta la muestra de semilla sobre una superficie lisa, use un raspador para mezclar la muestra verticalmente y luego horizontalmente, y repita la mezcla 4 veces. Luego divide las semillas en dos partes y vuelve a dividir cada parte por la mitad para obtener 4 partes. Luego divide cada sección en dos nuevamente, terminando con 8 secciones. Fusiona y mantén las partes entrelazadas y quita las 4 partes restantes. Repita los pasos de muestreo anteriores hasta que la calidad de las semillas sea consistente con la calidad de las muestras enviadas para inspección. 2.1.2 Los pasos para el análisis de claridad son los siguientes: (1) Pesar el peso total de las muestras enviadas para inspección, registrado como M. Compruebe si las muestras enviadas para inspección contienen contaminantes pesados, como terrones de tierra, piedras o semillas grandes mezcladas con semillas pequeñas. Si hay una mezcla pesada, sáquela y pésela, registrándola como m. Luego separe las semillas de otras plantas y las impurezas de la mezcla pesada. La masa de las semillas de otras plantas se registra como m1 y la masa de las impurezas se registra como m2. (2) Utilice un plato divisor de muestras para tomar una muestra completa (que contenga aproximadamente 2500 granos) de las muestras enviadas para inspección después de seleccionar los contaminantes pesados, y pese la masa de la muestra. Vierta la muestra en el banco de análisis y separe las semillas limpias, otras semillas de plantas y las impurezas. Durante la separación se pueden utilizar tamices y las sustancias que son difíciles de separar con tamices se separan manualmente. Luego coloque las partes separadas en los contenedores correspondientes. (3) Calcule el contenido de semillas netas, otras semillas de plantas e impurezas en la muestra respectivamente y regístrelos como P1, OS1 e I1 respectivamente. El dividendo durante el cálculo es la suma de las masas de los tres componentes. La suma de las masas de los tres componentes no puede ser mayor al 5% de la muestra original. Para calcular el contenido de cada ingrediente, la fórmula de cálculo es la siguiente: Semillas netas (P2): P2 (%) = P1 × (Mm)/M Otras semillas de plantas (OS2): OS2 (%) = OS1 × (Mm) /M + m1/M ×100 Impurezas (I2): I2 (%) = I1 × (Mm)/M + m2/M × 100 La comprobación final debe ser: (P2 + OS2 + I2) = 100,00%. Redondeo: primero verifique si la suma de cada componente es 100,0%. Los errores inferiores al 0,05% se pueden ignorar. Si la suma es 99,9% o 100,1%, entonces suma o resta 0,1% del valor más bajo. Si el valor de redondeo es superior al 0,1%, se debe comprobar si hay errores en el cálculo. 1.2.3 Los materiales para medir el peso son muestras de semillas limpias K-3, K-13 y K-14. El Reglamento de inspección de semillas de cultivos de mi país (GB/T 3543.1~3543.7-1995) estipula que los métodos para medir el peso de las semillas en mil granos incluyen el método de los cien granos y el método de los mil granos. Esta prueba utiliza los dos métodos anteriores para determinar el peso de mil semillas de semillas de Cassia. Los pasos son los siguientes: (1) Método de cien semillas: Tome J-1, J-5, J-7 y J-8 limpios. semillas y medir cada muestra utilizando el método de las cien semillas. Su peso de mil granos es el doble. Es decir, contar aleatoriamente 100 semillas de cada muestra, repetir 8 veces y pesarlas por separado; luego contar 100 semillas nuevamente, repetir 8 veces y pesarlas por separado. El resultado del pesaje tiene una precisión de 0,001 g. Calcule la media, la desviación estándar y el coeficiente de variación para cada método de cien granos. (2) Método de los mil granos: Tome las semillas limpias de J-1, J-5, J-7 y J-8 y mida el peso de los mil granos de cada muestra dos veces utilizando el método de los mil granos. Es decir, contar aleatoriamente 500 semillas de cada muestra, repetir dos veces y pesarlas por separado; luego contar 500 semillas nuevamente, repetir dos veces y pesarlas por separado. El resultado del pesaje tiene una precisión de 0,001 g. Calcule el valor medio y la diferencia entre repeticiones para cada método de mil granos. 1.2.4 Los materiales de prueba de determinación de humedad son semillas limpias K-1 y K-4. 2.1.2.4 La medición de la humedad se basa en el "Reglamento de inspección de semillas de cultivos". Los métodos de medición de la humedad de las semillas incluyen el método de secado a alta temperatura constante y el método de secado a baja temperatura constante. Este experimento utiliza los dos métodos anteriores para determinar el contenido de humedad de las semillas de Sophora sophora. Los pasos para el secado a temperatura alta y constante son los siguientes: (1) Tome 25 g de semillas limpias de J-5 y J-7 respectivamente y triture las semillas con una trituradora pequeña durante 15 s (componentes con una finura de trituración de más del 90 % puede pasar a través de una malla de 3 mm) ). (2) Tome 6 cajas de aluminio limpias y colóquelas en un horno a 130 °C para que se sequen previamente durante 1 hora. Después de 1 hora, saca la caja de aluminio y ponla en una secadora para que se enfríe y se seque durante 30 minutos. Después de enfriar, pese la caja de aluminio, luego agregue 4,5 ~ 5,0 g de semillas molidas y pese el peso total. Cada muestra se repitió 3 veces. (3) Coloque la caja de aluminio en un horno a 130 ° C. Sáquela cada 0,5 horas y póngala en un desecador para que se enfríe, luego pésela hasta que el tiempo total de secado sea de 3,5 horas. (4) Calcule la humedad de la semilla medida después de cada secado. Todos los resultados de pesaje tienen una precisión de 0,001 g. La diferencia entre réplicas de una misma muestra no puede exceder el 0,2%. Los pasos del método de secado a baja temperatura constante son los mismos que los del secado a alta temperatura constante, la diferencia es que la temperatura de secado de las semillas es de 103°C y el tiempo de secado es de 17 horas. 1.2.5 Identificación de autenticidad: Tome 400 semillas K-15 y mida su largo y ancho con un pie de rey. Luego se observaron las semillas bajo un estereomicroscopio y se registraron y fotografiaron las características morfológicas de las semillas. 1.2.6 Prueba de germinación Se estudió el método de eliminación de la dureza de Sophora flavescens, el lecho de germinación adecuado, la temperatura de germinación adecuada, el primer y último tiempo de conteo de la prueba de germinación y los criterios de evaluación de plántulas normales y anormales. Investigación sobre la eliminación de semillas duras: Los pasos son los siguientes: (1) Tome 800 semillas K-12 del mismo tamaño y 200 semillas cada una en el grupo de control. (2) El grupo de control se enjuagó tres veces con agua destilada y el grupo experimental se sumergió en ácido sulfúrico concentrado durante 40 min, 50 min y 60 min respectivamente. (3) Vierta el ácido sulfúrico, enjuague con agua del grifo hasta que no queden burbujas blancas y luego enjuague con agua destilada 3 veces. (4) Coloque las semillas del grupo de control y de cada tratamiento en placas de Petri limpias, agregue agua destilada y déjelas en remojo durante 18 horas. Haz una prueba de germinación en papel. Repetir 4 veces, 50 cápsulas/repetición. Cuente la cantidad de semillas germinadas todos los días. Selección del lecho de germinación: Tome 1200 semillas K-15 de tamaño uniforme, retire las semillas duras y realice pruebas de germinación utilizando los métodos de arena, arena, papel y rollo de papel. El funcionamiento es el mismo que 2.1.2.6. Cada día se contó el número de semillas germinadas y el crecimiento de las hojas verdaderas se registró como germinación. Selección de temperatura de germinación: Tomar 1.200 semillas K-15 de tamaño uniforme y eliminar las posibles durezas. La prueba de germinación se realizó utilizando el método de germinación entre rodillos y se cultivó en condiciones de luz continua de 15°C, 20°C, 25°C y 30°C. Cada nivel se repite 3 veces, 100 granos/repetición, 50 granos/repetición. Cada día se contó el número de semillas germinadas y el criterio de germinación fue la apariencia de las estructuras principales de las plántulas. Después de la germinación, se seleccionaron 25 plántulas con crecimiento uniforme de cada réplica y se midió el peso fresco. Tiempo de conteo de la prueba de germinación: Tome 400 semillas de K-13 y K-15 cada una y retire las semillas duras. La germinación se llevó a cabo entre rollos de papel y se cultivó bajo luz continua a 30°C. Cada muestra se repitió 4 veces, con 100 granos/repetición y 50 granos/repetición. Cuente la cantidad de semillas germinadas todos los días. Estándares de evaluación de plántulas: después de la prueba del tiempo de conteo de germinación, observe la morfología de las plántulas y determine la morfología normal y anormal de las plántulas según las "Directrices de implementación GB/T3543.1~3543.7-1995 para las regulaciones de inspección de semillas de cultivos". 1.2.7 Estudio sobre la determinación de la viabilidad El método de tinción con tetrazolio para determinar la viabilidad de las semillas de Sophora flavescens incluye el método de humectación previa, el tratamiento previo al teñido, la concentración de la solución de tetrazolio y el tiempo de teñido, y los estándares de identificación morfológica del teñido. Método de prehumedecimiento: Tome 400 semillas de K-13, K-14 y K-15, retire la dureza y colóquelas en placas de Petri de 15 cm, agregue la cantidad adecuada de agua destilada para remojar. Observe la absorción de agua de las semillas y el ablandamiento de la testa cada 4 horas. Pretratamiento para teñir: Las semillas de Sophora flavescens no tienen endospermo y la cubierta de la semilla es fácil de desprender. Hay dos cotiledones, gruesos y gruesos, con el embrión, el hipocótilo y la radícula en el medio. Antes de teñir, retire la cubierta de la semilla, separe los dos cotiledones y tome un cotiledón con el embrión, el hipocótilo y la radícula para teñir. Concentración de la solución de tetrazol y tiempo de teñido: tomar 200 semillas K-15, quitar la dureza, remojar en agua y humedecer previamente durante 24 horas, y realizar un tratamiento previo al teñido. Tome 4 placas de Petri limpias de 9 cm, coloque 50 semillas en cada una y vierta una solución de TTC al 0,5% o al 1,0%. Cada tratamiento se replicó 2 veces. Teñir en la oscuridad a 30°C. Después de 8 horas de teñido, las semillas estaban ligeramente rojas, después de eso, se tomaron aleatoriamente 20 semillas de soluciones de TTC al 0,5% y 1,0% cada 2 horas y se fotografiaron al microscopio y se registró el grado de tinción hasta 14 horas después del teñido. Identificación de la morfología del teñido: Tomar 400 semillas de K-13 y K-14 cada una, quitarles la dureza, remojarlas en agua y prehumedecerlas durante 24 horas y realizar un tratamiento previo al teñido. Colóquelo en una placa de Petri de 9 cm, 50 granos por placa, vierta una solución de TTC al 1,0% y tiña durante 14 horas en la oscuridad a 30°C. Después de teñir, vierta y limpie la solución de tinte restante en la superficie de las semillas, luego coloque las semillas bajo un estereomicroscopio para observar la morfología del teñido y clasificarlas para determinar las formas de semillas viables y no viables, y luego tomar fotografías de ellas. . Determine la viabilidad de las semillas K-13 y K-14 basándose en los estándares de identificación morfológica de tinción provisional. Tome 400 semillas K-1, K-4 y K-15 al azar y mida su viabilidad utilizando el método anterior. Al mismo tiempo, tome 400 semillas de cada una de K-1, K-4, K-13, K-14 y K-15, realice una prueba de germinación en arena y calcule la tasa de germinación. Analice la correlación entre la viabilidad medida y la tasa de germinación para determinar si el estándar de identificación morfológica de tinción es exacto. 1.3 Resultados y análisis 1.3.1 Análisis de claridad Los materiales de prueba son muestras de semillas K-1, K-3, K-4, K-13, K-14 y K-15. La pureza más baja es 93,39% y la más alta la pureza es del 96,87% (Tabla 2). Tabla 2 Claridad de la muestra de Sophora flavescens N.° de muestra Claridad N.° de muestra Claridad K-1 98,75 % K-13 94,98 % K-3 93,39 % K-14 94,31 % K-4 96,74 % K-15 96,87 % 1.3.2 Mil granos peso Utilizando el método de las 100 semillas para medir el peso de las semillas de Sophora flavescens, el coeficiente de variación de 8 repeticiones puede ser mayor que 4,0 (Cuadro 3). El coeficiente de variación entre réplicas es grande y los resultados no son confiables y no pueden usarse para calcular el peso de mil granos. Cuadro 3 Determinación del peso de mil semillas de Sophora flavescens mediante el método de 100 semillas Número de muestra Número medio de determinaciones (g) Desviación estándar (S) Coeficiente de variación (CV) Si el coeficiente de variación es inferior a 4,0 Mil -peso de semilla (g) K-3 La primera vez 3.97 0.22 5.5 No 39.75 La segunda vez 3.94 0.18 4.6 No 39.44 K-13 La primera vez 4.49 0.17 3.8 Sí 44.94 La segunda vez 4.43 0.20 4.3 No 44.26 K-14 1.a vez 4.69 0.10 2.2 Sí 46.88 2 Segunda vez 4,70 0,28 6.0 No 47.04 Nota: Una medida en la tabla se refiere a la aplicación. El peso de las semillas por mil semillas se determina una vez mediante el método de las cien semillas, es decir, se cuentan 100 semillas cada vez y el número se repite 8. veces y pesado. El peso de las semillas de Sophora flavescens se midió mediante el método de los mil granos, la relación entre la diferencia entre las dos repeticiones y el valor medio fue inferior al 5%, ver Cuadro 4. Los resultados son fiables y pueden utilizarse para calcular el peso de mil granos. Tabla 4 Determinación del peso de mil semillas de Sophora flavescens por el método de las mil semillas Número de muestra Número medio de mediciones (g) Diferencia entre repeticiones/media Diferencia entre repeticiones/media Si la diferencia entre repeticiones/media es menos del 5% Peso de mil semillas (g) K-3 La primera vez 20,19 3,1% es 40,38 La segunda vez 20,03 0,5% es 40,06 K-13 La primera vez 22,35 0,0% es 44,70 La segunda vez 22,29 3,7% es 44.58 K-14 La primera vez 23.71 4.2% es 47.42 La segunda vez 23.26 1.8% es 46.52 Nota: en la tabla Determinación única se refiere a medir el peso de mil semillas de las semillas una vez usando el método de las mil semillas, es decir, contando 500 semillas cada vez, repitiendo el conteo dos veces y pesando. 1.3.3 Medición de humedad Cuando se seca a temperatura alta y constante, el contenido de humedad medido aumenta gradualmente a medida que se extiende el tiempo de secado. Hasta después de 1,0 h de secado, el contenido de humedad medido de las semillas ya no cambia. Agregar la Tabla 5. Existe una diferencia significativa entre el secado durante 0,5 h y el secado durante 1,0 h. No existe una diferencia significativa entre el secado durante 1,0 h y el secado durante 1,5 h y 2,0 h. Por lo tanto, el secado a temperatura alta constante durante 1,0 h puede determinar el contenido de humedad de las semillas de Sophora flavescens. Tabla 5 Determinación de la humedad de las semillas de Sophora flavescens mediante secado a 130 ℃ Tiempo de secado (h) Valor de medición de humedad (%) K-1 K-4 0,5 11,43±0,02b 10,38±0,01b 1,0 11,95±0,11a 10,66± 0.04a 1.5 12.00±0.04a 10.72±0.01a 2.0 12.01±0.02a 10.73±0.03a En resumen, el contenido de humedad de las semillas de Sophora flavescens se midió usando secado a alta temperatura constante durante 1 h. 1.3.4 La identificación de autenticidad utiliza el método de morfología de apariencia de la semilla para la identificación de autenticidad. Esférico ovalado u obovado, 3,8~6,4 mm de largo, 3,1~4,8 mm de ancho, superficie de color marrón claro o tostado, lisa, ligeramente brillante. La parte superior es roma, el extremo inferior puntiagudo y sobresale hacia la superficie ventral en forma de olécranon corto; en el centro del dorso se aprecia una cresta longitudinal (a veces no muy evidente) y una cresta lineal de color marrón oscuro. La cresta de la semilla se puede ver en la superficie ventral, extendiéndose hasta una chalaza en forma de punto en la parte superior, conectada a un hilio en forma de hoyo cerca del extremo inferior. Hay dos cotiledones, gruesos. 1.3.5 Método de prueba de germinación para eliminar la dureza: el remojo con ácido sulfúrico puede eliminar eficazmente la dureza de las semillas de Sophora flavescens, consulte la Figura 3-3. Aproximadamente el 50% de las semillas en el grupo de tratamiento germinaron en el papel el segundo día, mientras que la tasa de germinación de las semillas en el grupo de control fue cercana a 0. El sexto día, la tasa de germinación del grupo de tratamiento alcanzó aproximadamente el 60%, mientras que la del grupo de control fue sólo del 20%. También existen diferencias en los efectos del tratamiento en cada nivel del grupo de tratamiento. La tasa de germinación de las semillas tratadas durante 40 min siempre fue menor que la de las semillas tratadas durante 50 min; las tasas de germinación de las semillas tratadas durante 50 min y 60 min fueron similares en los primeros 4 días, y las tasas de germinación de semillas tratadas durante 50 minutos fueron similares en los días 5 y 6. Las semillas nuevas aún germinan, pero la tasa de germinación de las semillas después del tratamiento durante 60 minutos básicamente no cambia. Por lo tanto, se utiliza el método de remojo en ácido sulfúrico (analíticamente puro) durante 50 minutos para eliminar la dureza de las semillas de Sophora flavescens. Selección del lecho de germinación: Las semillas de Sophora flavescens tienen diferentes tasas de germinación en diferentes lechos de germinación. Las tasas de germinación en papel, entre rollos de papel y en arena fueron todas superiores al 90%, y las tasas de germinación entre rollos de papel y en papel fueron significativamente más altas que en arena. Las condiciones de crecimiento de las plántulas de Sophora flavescens en diferentes lechos de germinación son diferentes. Las condiciones de crecimiento son buenas entre rollos de papel y en arena, y las partes aéreas y subterráneas de las plántulas están completamente desarrolladas; las raíces principales de las plántulas que germinan sobre el papel no se alargan, las raíces laterales se desarrollan lentamente, las El sistema de raíces es en general corto y el crecimiento es pobre. Considerando la tasa de germinación y el crecimiento de las plántulas de semillas de Sophora flavescens en diferentes lechos de germinación, se determinó que el lecho de germinación óptimo para las semillas de Sophora flavescens es la sala de rollos de papel. Selección de temperatura de germinación: las semillas de Sophora flavescens tienen diferentes tiempos de inicio y finalización de germinación en diferentes condiciones de temperatura. A medida que aumenta la temperatura, el ciclo de germinación de Sophora flavescens se acorta gradualmente y avanza el tiempo de inicio de la germinación. Entre ellos, las plántulas crecieron lentamente en condiciones de 15°C, y las semillas comenzaron a germinar el día 13, y algunas semillas continuaron germinando hasta el día 27; en condiciones de 20°C, 25°C y 30°C, las semillas comenzaron a germinar del 5 al 7 día, y después de 15 días, básicamente no aparecen semillas recién germinadas. La tasa de germinación, el índice de germinación y el índice de vitalidad de las semillas de Sophora flavescens en diferentes condiciones de temperatura son significativamente diferentes, consulte la Tabla 6. La tasa de germinación a 20 ℃, 25 ℃ y 30 ℃ es significativamente mayor que 15 ℃, el índice de germinación por debajo de 30 ℃ y el índice de vitalidad fueron significativamente más altos que otras temperaturas, seguidos de 25°C. Combinado con el ciclo de germinación, se determinó que la temperatura óptima de germinación de Sophora flavescens era 30°C. Tabla 6 Tasa de germinación, índice de germinación e índice de vitalidad de Sophora flavescens bajo diferentes condiciones de temperatura Temperatura (°C) Tasa de germinación (%) Índice de germinación Índice de vitalidad 15 88,67±0,02c 5,16±0,07d 23,57±0,63d 20 95,67±0,03a 9,29 ±0.37 c 11.24±0.54c 25 92.33±0.03ab 11.91±0.45b 14.58±0.48b 30 98.00±0.00a 16.22±0.06a 19.21±0.84a Tiempo de conteo de la prueba de germinación: En el séptimo día, el número de semillas germinadas aumentó más rápido , y después de 11 días, el número de semillas germinadas se mantuvo básicamente sin cambios. Determine el día 7 como el tiempo de conteo inicial y el día 11 como el último tiempo de conteo. Criterios de evaluación de plántulas: Las plántulas de Sophora flavescens son plántulas de cotiledones que retienen el suelo, con raíces rectas, tallos delgados y hojas verdaderas pequeñas. Los criterios de evaluación para plántulas de Sophora flavescens son los siguientes: Plántulas normales: A Plántulas completas: Los cotiledones están intactos, la raíz principal y las raíces laterales están bien desarrolladas y la punta del tallo es normal. B Plántulas con defectos menores: los cotiledones están parcialmente dañados pero no provocan moho ni pudrición. C Plántulas infectadas secundarias: cumple con los requisitos anteriores para plántulas completas y plántulas con defectos leves y están infectadas por bacterias patógenas externas. Plántulas anormales: A. Plántulas dañadas: B. Plántulas deformadas: La raíz principal de la plántula es corta y pequeña, el tejido está dañado, no hay punta de raíz y las raíces laterales son pocas y pequeñas, las raíces están curvadas en forma de bola, y la raíz principal y las raíces laterales no se pueden distinguir; la punta del tallo de la plántula está dañada y no puede continuar creciendo. C. Plántulas mohosas o podridas: Las plántulas se enmohecen o se pudren debido a las bacterias dentro de las semillas. 1.3.6 Método de prehumedecimiento para la determinación de la viabilidad: Las semillas de Sophora flavescens se pueden activar completamente después de remojarlas en agua y humedecerlas previamente durante 18 a 24 horas. Tratamiento previo al teñido: Retire la cubierta de la semilla antes de teñir, retire un cotiledón y deje la mitad de la semilla con la radícula, el embrión y el hipocótilo. Concentración de la solución de tetrazolio y tiempo de teñido: a medida que se prolonga el tiempo de teñido, el teñido se profundiza gradualmente; las soluciones de teñido de alta concentración tiñen más oscuro, consulte la Figura 3-9. Después de 14 horas de teñido, algunas semillas en la solución de tetrazol al 0,5% todavía estaban ligeramente teñidas, mientras que todas las semillas en la solución de tetrazol al 1,0% estaban teñidas de rojo. Por lo tanto, se determinó que la concentración de teñido de la solución de tetrazolio era del 1,0% y el tiempo de teñido fue de 14 h. Identificación de la morfología de la tinción: con referencia al método de identificación de la morfología de la tinción con tetrazolio de las semillas de soja, la morfología de la tinción de las semillas de Sophora flavescens se divide en los siguientes 6 tipos (consulte la Figura 3-10): todas teñidas (Figura 3-10a), solo una Una pequeña parte de los cotiledones no está teñida (Figura 3-10b), todos no están teñidos (Figura 3-10c), el embrión no está teñido (Figura 3-10d), el embrión y la radícula del hipocótilo no están teñidos (Figura 3-10e). ), más de dos tercios de los cotiledones no están teñidos (Figura 3-10f). Debido a que los cotiledones de las semillas de Sophora flavescens son gruesos, el rango máximo permitido de los cotiledones que no manchan se establece en dos tercios. Figura 10 Morfología de la tinción con tetrazolio de semillas de Sophora flavescens. Los criterios de determinación de la morfología de la tinción se muestran en la Tabla 7. Cuadro 7 Estándares para la identificación de la viabilidad de las semillas de Sophora flavescens. Morfología de la tinción. ¿Viabilidad o no? Todo teñido. Cotiledones menos de dos tercios sin teñir. Cotiledones más de dos tercios sin teñir. Sin gérmenes. Coeficiente de correlación entre la viabilidad y la germinación. La tasa de todas las semillas de Sophora flavescens sin teñir fue de 0,999 y el valor de R2 fue de 0,982, lo que indica una correlación significativa entre los dos, como se muestra en la Figura 3-11. Por lo tanto, los métodos de medición de la vitalidad y los estándares de identificación anteriores son precisos y fiables. 2 Investigación sobre estándares de clasificación de calidad de las semillas de Sophora flavescens 2.1 Los materiales de prueba son los mismos que en 1.3. 2.2 Método de prueba: La pureza, el peso de mil granos, la humedad y la tasa de germinación de las muestras de semillas se seleccionan como indicadores para la clasificación de la calidad de las semillas, y los indicadores de las muestras se miden utilizando el método derivado en 2.1. La calidad de la semilla se calificó utilizando el método de media más o menos desviación estándar. Para los tres indicadores de tasa de germinación, peso de mil granos y claridad, se utiliza el promedio más 1 vez la desviación estándar como punto de división para los grados 1 y 2, el promedio se utiliza como punto de división para los niveles 2 y 3, y el promedio menos 1 veces la desviación estándar se utiliza como 3 El punto límite inferior del nivel de semilla. Para la humedad, la media menos 1 vez la desviación estándar se usa como punto de corte para los niveles 1 y 2, la media se usa como punto de corte para 2 y 3, y la media más 1 vez la desviación estándar es Se utiliza como punto límite inferior para las semillas de nivel 3. Las semillas de Cassia se dividen en 3 grados. 2.3 Resultados y análisis 2.3.1 Determinación de los indicadores de calidad de las semillas El rango de pureza de las semillas de Sophora flavescens es 88,85% ~ 98,84%, y el valor promedio es 96,16%. Entre ellos, la pureza de 1 semilla es inferior al 90,00%, y las 17 semillas restantes tienen una claridad superior al 90,00% (Cuadro 8). Tabla 8 Claridad de muestras de semillas de Sophora flavescens Muestra No. Diferencia de ganancia y pérdida de claridad Muestra No. Diferencia de ganancia y pérdida de claridad K-1 98,75% 0,0% K-10 96,27% -0,1% K-2 96,65% -0,1% K-11 95,72% -0,1% K-3 93,39% 0,1% K-12 96,23% -0,1% K-4 96,74% 0,0% K-13 94,98% 0,1% K-5 88,85% 0,2% K-14 94,31% 0,0% K- 6 98,84 % 0,3 % K-15 96,87 % 0,0 % K-7 97,75 % -0,2 % K-16 98,38 % -0,1 % K-8 97,41 % 0,0 % K-17 95,75 % -0,2 % K-9 98,34 % -0,1 % K -18 95,70% 0,0% El peso de mil granos de las semillas de Sophora flavescens varía de 34,67g a 62,53g, con un valor promedio de 47,35g. Hay 3 semillas cuyo peso de mil semillas es inferior a 40,00 g, siete semillas cuyo peso de mil semillas está entre 40,00 g ~ 50,00 g, siete semillas cuyo peso de mil semillas está entre 50,00 g ~ 60.00 g, y peso de mil semillas mayor a 60.00 g (Cuadro 9). Cuadro 9 Peso de mil semillas de muestras de semillas de Sophora flavescens Muestra No. Peso de mil semillas (g) Diferencia entre réplicas/media Muestra No. Peso de mil semillas (g) Diferencia entre réplicas/media K-1 52.76 1.4% K-10 39,66 -0,3% K-2 34,67 - 1,0% K-11 47,75 1,7% K-3 40,06 0,5% K-12 51,09 3,8% K-4 50,92 1,1% K-13 44,57 3,7% K-5 51,04 1,6% K-14 46,52 1,8% K-6 41,81 -0,7 % K-15 45,11 -0,8% K-7 52,69 4,7% K-16 38,26 0,8% K-8 48,09 2,3% K-17 50,68 3,9% K-9 54,14 0,6% K-18 62.53 0.7% El rango de variación de humedad de la semilla de Sophora flavescens es de 7.94%~11.95%, con un valor promedio de 9.71%, una semilla tiene una pureza menor a 8.00%, 5 semillas tienen una pureza entre 8.00%~9.00% y 6 semillas tenían una pureza entre 9,00%~10,00%, la pureza de 4 semillas estaba entre 10,00% y 11,00%, y la claridad de 2 semillas era mayor que 11,00% (Tabla 10). Tabla 10 Humedad de la muestra de semilla de Sophora flavescens número de muestra diferencia de humedad de la muestra entre réplicas número de muestra diferencia de humedad de la muestra entre réplicas K-1 11,95% 0,15% K-10 10,18% 0,11% K-2 8,94% 0,05% K-11 10,08% 0,17% K -3 9,33% 0,16% K-12 8,98% 0,06% K-4 10,66% 0,06% K-13 9,31% 0,15% K-5 9,82% 0,07% K-14 8,77% 0,17% K-6 10,83% 0,04% K- 15 9,92% 0,13% K-7 9,96% 0,15% K-16 8,96% 0,03% K-8 7,94% 0,14% K-17 8,53% 0,18% K-9 11,02% 0,01% K-18 9,53% 0,08% Amargo La germinación La tasa de muestras de semillas de ginseng osciló entre 28,00% y 92,00%, con un valor promedio de 59,43%. Entre ellos, la tasa de germinación de 1 semilla es inferior al 30,00%, la tasa de germinación de 4 semillas está entre el 40,00% y el 50,00%, la tasa de germinación de 4 semillas está entre el 50,00% y el 60,00% y la tasa de germinación de 6 semillas está entre 60.00% y 70.00%. , la tasa de germinación de 2 partes estuvo entre 80.00% y 90.00%, y la tasa de germinación de 1 parte fue superior a 90.00% (Cuadro 11). Tabla 11 Tasa de germinación de muestras de semillas de Sophora flavescens Muestra No. Tasa de germinación Muestra No. Tasa de germinación K-1 86.25% K-10 64.25% K-2 47.50% K-11 42.25% K-3 60.00% K-12 43.75% K -4 57,75 % K-13 61,50 % K-5 57,50 % K-14 28,00 % K-6 92,00 % K-15 84,75 % K-7 63,00 % K-16 51,50 % K-8 58,50 % K-17 63,00 % K -9 45,75 % K-18 62,50% 2.3.2 Clasificación de la calidad de las semillas De acuerdo con los resultados de las pruebas, la clasificación de la calidad de las semillas de Sophora flavescens se muestra en la Tabla 12. Tabla 12 Calidad de la semilla de Sophora flavescens grado tasa de germinación peso de mil semillas humedad pureza 1 ≥75.54% ≥54.15g ≤8.71% ≥98.53% 2 59.43%~75.54% 47.35g~54.15g 8.71%~9.71% 96,16%~98,53% 3 43,32%~59,43% 40,55g~47,35g 9,71%~10,70% 93,80%~96,16%
T/SXZYC 008-2023 Historia
2023T/SXZYC 008-2023 Norma de calidad de semillas de Sophora flavescens.